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Hôte – Pathogène
Observer les interactions entre cellules, pathogènes et environnement cellulaire
Les interactions hôte–pathogène impliquent des réorganisations rapides et complexes : adhésion, entrée, trafic intracellulaire, formation de vacuoles, réponse cellulaire, altérations morphologiques et modifications de l’organisation interne de la cellule infectée.
L’holotomographie permet d’observer ces phénomènes sans marquage, en 3D et dans le temps, tout en préservant les cellules vivantes. Elle apporte une lecture structurelle et biophysique globale de l’infection, complémentaire des approches de fluorescence utilisées pour identifier les pathogènes, les marqueurs cellulaires ou les compartiments impliqués.
Label-free – Quantitatif – Non invasif – Physiologique
Ce que l’holotomographie apporte
• Imagerie 3D sans marquage
Observation des cellules hôtes et de leur organisation interne sans ajout systématique de fluorophore.
• Suivi dynamique de l’infection
Possibilité de suivre les interactions dans le temps, depuis les premières étapes de contact jusqu’aux réorganisations cellulaires plus avancées.
• Détection d’altérations
structurelles précoces
Mise en évidence de changements morphologiques ou biophysiques pouvant apparaître avant des modifications clairement visibles par fluorescence.
• Quantification intrinsèque
Mesure de paramètres liés à l’indice de réfraction, au volume cellulaire, à la masse sèche, à la densité intracellulaire et à l’évolution morphologique.
• Préservation des cellules vivantes
Approche adaptée aux suivis longs et aux modèles sensibles, avec une perturbation limitée de l’échantillon.
• Contexte structurel pour la fluorescence
La fluorescence permet d’identifier le pathogène ou un marqueur spécifique ; l’holotomographie replace cette information dans l’organisation globale de la cellule hôte.
Interactions hôte-pathogène
Adhésion, invasion, dynamique
Réponse immunitaire
Adhésion, phagocytose, défense
Quantification multi-paramètres
Volume, masse sèche, densité, morphologie
Suivi temporel 3D
Interaction, évolution, réponse
Questions biologiques adressées
- Comment la cellule hôte se réorganise-t-elle au cours de l’infection ?
- Peut-on détecter des altérations structurelles précoces après exposition au pathogène ?
- Comment évoluent la morphologie, le volume ou la densité intracellulaire des cellules infectées ?
- Comment suivre la progression d’une infection dans le temps sans perturber les cellules ?
- Comment replacer un pathogène fluorescent dans le contexte structurel de la cellule hôte ?
- Peut-on comparer différentes conditions d’infection, souches, traitements ou temps post-infection ?
ANALYSE QUANTITATIVE
Suivre une interaction cellulaire, population par population
Au-delà de l'image, chaque acquisition alimente une mesure. Lors d'une interaction entre deux populations cellulaires, l'holotomographie suit et quantifie chaque population séparément dans le temps, sans marquage, révélant la dynamique et les transferts de matière entre les deux partenaires de l'interaction.
SUIVI SIMULTANÉ DES DEUX POPULATIONS
Segmentation et quantification label-free indépendante de chaque population en interaction, sans marquage fluorescent.
CROISSANCE ET DIVISION INDIVIDUELLE
Suivi du nombre de cellules et de leur division au cours du temps pour chaque population.
MASSE SÈCHE ET TRANSFERT DE BIOMASSE
Quantification de la masse sèche de chaque population, permettant de mettre en évidence un
transfert de biomasse entre les deux partenaires de l'interaction
DYNAMIQUE TEMPORELLE
Suivi continu de l'interaction sur plusieurs heures, avec quantification à chaque temps d'acquisition.
Explorez l'ensemble des mesures et possibilités d'analyse offertes par l'holotomographie → découvrir l'analyse quantitative complète.
Exemples de modèles pertinents
- Cellules épithéliales infectées
- Bactéries intracellulaires
- Modèles Listeria monocytogenes
- Interactions virus–cellule hôte
- Parasites et cellules infectées
- Co-cultures hôte–pathogène
- Modèles organoïdes infectés
- Suivi de réponse cellulaire à un traitement anti-infectieux
Quand ajouter la fluorescence ?
L’holotomographie apporte une lecture structurelle, quantitative et sans marquage de la cellule hôte. Lorsque la question scientifique nécessite d’identifier précisément le pathogène, une protéine, une vacuole, un compartiment ou une voie de réponse cellulaire, la fluorescence corrélative vient compléter cette lecture.
La fluorescence localise les acteurs de l’infection.
L’holotomographie révèle le contexte structural et biophysique dans lequel l’interaction se déroule.
Suivi de l'invasion de Toxoplasma gondii et du du recrutement des mitochondries dans les fibroblastes
Systèmes adaptés
HT-X1 Mini
Pour explorer l’intérêt de l’holotomographie sur des modèles infectieux ciblés, tester des conditions expérimentales et initier des observations sans marquage.
HT-X1 Plus
Pour l’imagerie holotomographique 3D quantitative, le suivi dynamique d’interactions hôte–pathogène, les cellules vivantes, les modèles complexes et la corrélation fluorescence.
Autres applications possibles
Neurosciences
Organoïdes & Modèles 3D
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